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              實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)結(jié)果出現(xiàn)異常解析
              點(diǎn)擊次數(shù):628 更新時(shí)間:2023-11-13

                    實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)(real-time PCR)也叫qPCR(Quantitave PCR),是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團(tuán),利用熒光信號(hào)累積實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR進(jìn)程,最后通過特定數(shù)學(xué)原理對(duì)未知模板進(jìn)行定量分析的方法。下面對(duì)實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)結(jié)果出現(xiàn)異常解析:


              1、無Ct值出現(xiàn)

              a)、 檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟有誤:一般染料法采用72℃延伸時(shí)采集,探針法則一般在退火結(jié)束時(shí)或延伸結(jié)束采集信號(hào)。
              b) 、引物或探針降解:可通過PAGE電泳檢測(cè)其完整性。
              c) 、模板量不足:對(duì)未知濃度的樣品應(yīng)從系列稀釋樣本的最高濃度做起。
              d) 、模板降解:避免樣品制備中雜質(zhì)的引入及反復(fù)凍融的情況。
              e) 、反應(yīng)循環(huán)數(shù)不夠:一般都要在35個(gè)循環(huán)以上,可根據(jù)實(shí)驗(yàn)情況增加循環(huán),但高于45個(gè)循環(huán)會(huì)增加過多的背景信號(hào)。

              2、Ct值出現(xiàn)過晚

              a) 、擴(kuò)增效率極低:優(yōu)化反應(yīng)條件,嘗試三步法擴(kuò)增程序,或者重新設(shè)計(jì)引物。
              b)、 模板濃度太低:減少稀釋度,重復(fù)實(shí)驗(yàn)。
              c)、 模板降解:重新制備模板,重復(fù)實(shí)驗(yàn)。
              d)、 PCR產(chǎn)物太長:一般將PCR產(chǎn)物長度設(shè)計(jì)為100 bp-200 bp之間。
              e) 、反應(yīng)體系中存在PCR反應(yīng)抑制劑:一般為加入模板時(shí)帶入,導(dǎo)致模板質(zhì)量不高,加大模板稀釋倍數(shù)或者重新制備模板重復(fù)實(shí)驗(yàn)。

              3、陰性對(duì)照出現(xiàn)明顯擴(kuò)增

              a) 反應(yīng)體系組分(如水)被污染:實(shí)驗(yàn)過程中,更換新的Mix或者水重復(fù)實(shí)驗(yàn)。
              b) 標(biāo)本間的交叉污染或產(chǎn)物污染:反應(yīng)體系在超凈工作臺(tái)內(nèi)配制,對(duì)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行嚴(yán)格的區(qū)分,減少氣溶膠污染;使用帶濾芯的槍頭。
              c) 引物二聚體的出現(xiàn):引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化:應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)。
              d) 引物濃度不佳:適當(dāng)降低引物的濃度,并注意上下游引物的濃度配比。在35循環(huán)后陰性對(duì)照出現(xiàn)擴(kuò)增屬正常情況,可配合熔解曲線進(jìn)行分析。

              4、熔解曲線出現(xiàn)多峰

              a)、 非特異性擴(kuò)增。
              b) 、引物設(shè)計(jì)不佳:避免二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)。
              c)、 引物濃度不佳:適當(dāng)調(diào)整引物濃度。
              d) 、退火溫度低:提高退火溫度。
              e)、 模板中有基因組DNA的污染:RNA提取過程中避免基因組DNA的污染(DNaseI處理),或通過設(shè)計(jì)引物避免非特異性擴(kuò)增。

              5、出現(xiàn)引物二聚體

              a) 、優(yōu)化擴(kuò)增條件,如提高退火溫度,可利用梯度PCR,摸索最佳的Tm值。通常兩步循環(huán)(由95℃變性步驟直接進(jìn)入60℃退火和延伸步驟)有利于強(qiáng)效擴(kuò)增,因此引物設(shè)計(jì)時(shí)設(shè)定的成功退火溫度為60°C。
              b)、 引物濃度太高,適當(dāng)降低引物濃度。
              c) 、可通過瓊脂糖凝膠電泳確認(rèn)引物二聚體。引物二聚體在凝膠的底部形成擴(kuò)散條帶,通常位于100 bp以下。

              6、擴(kuò)增效率低

              a)、 反應(yīng)試劑中部分成分特別是熒光染料降解。
              b)、 反應(yīng)條件不佳:適當(dāng)降低退火溫度或改為三步擴(kuò)增法。
              c)、 反應(yīng)體系中有抑制物:一般為模板中引入,應(yīng)先把模板適當(dāng)稀釋,再加入到體系中,減少抑制物的影響。

              7、實(shí)驗(yàn)重復(fù)性差

              a)、 加樣體積失準(zhǔn):使用性能較好的移液槍,擴(kuò)大反應(yīng)體積,將模板做高倍稀釋,以大體積加入反應(yīng)體系中。
              b)、 定量PCR儀不同位置溫度控制不一致:定期校準(zhǔn)儀器。
              c)、 模板濃度太低:模板濃度越稀,重復(fù)性越差,減少模板稀釋度或提高加樣體積。
              d)、 qPCR mix沒有混勻,請(qǐng)使用前充分混勻。


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